Silvestri, Fausto (2013) Motilità e criopreservazione di spermatozoi di organismi marini: applicazioni biotecnologiche in acquacoltura ed ambiente. [Tesi di dottorato]

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Tipologia del documento: Tesi di dottorato
Lingua: Italiano
Titolo: Motilità e criopreservazione di spermatozoi di organismi marini: applicazioni biotecnologiche in acquacoltura ed ambiente
Autori:
AutoreEmail
Silvestri, Faustosilvestrifausto@hotmail.com
Data: 2 Aprile 2013
Numero di pagine: 127
Istituzione: Università degli Studi di Napoli Federico II
Dipartimento: Agraria
Scuola di dottorato: Scienze agrarie e agro-alimentari
Dottorato: Scienze e tecnologie delle produzioni agro-alimentari
Ciclo di dottorato: 25
Coordinatore del Corso di dottorato:
nomeemail
Barbieri, Giancarlobarbieri@cds.unina.it
Tutor:
nomeemail
Sansone, Giovannigiosanso@unina.it
Ferreira, Jaime Fernandojffmolusco@gmail.com
Data: 2 Aprile 2013
Numero di pagine: 127
Parole chiave: criopreservation
Settori scientifico-disciplinari del MIUR: Area 07 - Scienze agrarie e veterinarie > AGR/15 - Scienze e tecnologie alimentari
Area 05 - Scienze biologiche > BIO/07 - Ecologia
Area 05 - Scienze biologiche > BIO/09 - Fisiologia
Aree tematiche (7° programma Quadro): BIOTECNOLOGIE, PRODOTTI ALIMENTARI E AGRICOLTURA > Produzione sostenibile e gestione delle risorse biologiche della terra, della foresta e dell'ambiente acquatico
Depositato il: 04 Apr 2013 08:29
Ultima modifica: 23 Lug 2014 10:48
URI: http://www.fedoa.unina.it/id/eprint/9415
DOI: 10.6092/UNINA/FEDOA/9415

Abstract

In most aquatic organisms, especially those that have external fertilization, sperm motility is a fundamental parameter for the success of fertilization. In fact the knowledge of sperm motility can be very useful in the aquaculture and ecotoxicological sectors improving breeding procedures, cryopreservation protocols and spermiotoxicity assays. In this sense, this study aimed to: (1) obtain the basic knowledge on sperm motility of aquaculture marine organisms; (2) propose and optimize protocols for sperm cryopreservation; (3) propose and optimize ecotoxicological tests using cryopreservated sperm. For this we used the Mediterranean native organisms Mytilus galloprovincialis, Tapes decussatus, Paracentrotus lividus and Sparus aurata, the alien molluscs cultured in Italy Crassostrea gigas and Tapes philippinarum and the Brazilian native molluscs Perna perna, Crassostrea brasiliana, Crassostrea rhizophorae and Nodipecten nodosus. N. nodosus, M. galloprovincialis and T. decussatus showed the best performance in the general evaluation of physiological parameters of sperm motility. In general the method of sperm acquisition affected the performance of sperm motility of the studied species. For some species, the stored sperm at low temperatures for a short period has proved viable after activation. The N. nodosus sperm showed good viability to cryopreservation through the addition of EG 7% for 10 minutes of adaptation at room temperature and freezing gradient of -6°C/min. A reduced sperm motility was observed after cryopreservation and thawing of P. lividus, P. perna and C. brasiliana. The ecotoxicological assay through S. Aurata cryopreserved sperm demonstrated a remarkable potential as an universal test in the evaluation of different aquatic ecosystems. The species M. galloprovincialis, T. decussatus and N. nodosus were considered as potentially useful with biological systems in spermiotoxicity tests.

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